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ELISA試劑盒實(shí)驗(yàn)-如何選擇*化的包被條件？

1.包被抗原的選擇
包被抗原可分為天然蛋白、重組蛋白和小分子抗原三大類(lèi).天然蛋白需經(jīng)純化才能用直接吸附法包被,對(duì)于含雜質(zhì)較多的抗原可以采用間接捕獲法包被(先用能夠與目的抗原反應(yīng)的物質(zhì)如抗體直接吸附在酶標(biāo)板上,再通過(guò)特異性反應(yīng)使抗原固相化).ELISA試劑盒經(jīng)純化的重組蛋白一般皆可直接包板.小分子抗原比如多肽以及一些小分子有機(jī)化合物,由于分子量太小,往往難于直接吸附在酶標(biāo)板上,一般都先使其與無(wú)關(guān)蛋白質(zhì)如BSA等偶聯(lián),偶聯(lián)物吸附于固相載體上.

2.包被液的選擇
一般常用的是pH9.6的碳酸鹽緩沖液,如果包被的抗原在堿性條件下不穩(wěn)定的話,也可以使用pH7.2的磷酸鹽緩沖液.

3.包被溫度的選擇
通常是4-8度條件下過(guò)夜或者37度保溫2小時(shí),我們強(qiáng)烈建議4-8度條件下包被,有利于蛋白活性的保持.

4.包被濃度的選擇
包被的zui適濃度隨固相載體和包被物的性質(zhì)變化,一般蛋白質(zhì)的包被濃度為1-5ug/ml,要明確針對(duì)特定包被抗原的zui適包被濃度需要通過(guò)實(shí)驗(yàn)來(lái)確定.

包板后需要封閉嗎？應(yīng)該選擇什么樣的封閉體系？
封閉是否必要,取決于ELISA試劑盒的模式及具體的實(shí)驗(yàn)條件.一般說(shuō)來(lái),雙抗體夾心法,只要酶標(biāo)記物是高活性的,操作時(shí)洗滌*,不經(jīng)封閉也可得到滿意的結(jié)果.而在間接法測(cè)定中,封閉一般是*的.
常用的封閉劑有0.05%-0.5%的BSA、10%的小牛血清、1%明膠、5%的脫脂奶粉,AbMART推薦使用5%脫脂奶粉,價(jià)廉而且封閉能力強(qiáng),不過(guò)5%脫脂奶粉只適合短期內(nèi)使用,不宜長(zhǎng)期保存,所以試劑盒中較少使用.